Como micropropagação Bananas

As bananas que as pessoas geralmente comem não produzem sementes e são tradicionalmente cultivadas vegetativamente por meio de ventosas . No entanto , este método resulta em baixa de multiplicação de plantas , desde as bananeiras não estão se reproduzindo naturalmente. Nos últimos anos, um método de cultura de tecidos de propagação acelerou a produção de banana . As culturas são obtidos a partir de pontas de rebentos estéreis de bananeira mãe e as culturas são cultivadas em um tubo de ensaio . Há então o endurecimento primário no laboratório e endurecimento secundário no viveiro antes das bananeiras são finalmente plantada no campo . O Grande Naim é uma das mais cultivadas bananas . Propagando requer atenção meticulosa aos detail.Things você precisa

1.286 litros de água deionizada ( aproximado)

150 ml de MS Maior ( solução estoque de nutrientes )

15 ml MSO (solução estoque de componentes orgânicos )

15 ml de MS Minor (solução estoque de nutrientes )

3,75 ml de BA ( regulador de crescimento , citocinina )

30 g de açúcar ( fonte de carbono )

1,5 litros copo

prato /agitador com uma barra magnética

medidor de pH

solução (KOH )

Agar ( gelificante )

Autoclave

40 tubos de ensaio (dependendo de quantas culturas /plântulas você quer crescer hidróxido de potássio )

capela de fluxo laminar

Fórceps

Scalpel

Etanol (95%) para esterilizar ferramentas

chama de gás para esterilizar ferramentas

Parafilm de Grand Naim cultura da banana estéril

Mudas potes

envasamento solo (com turfa , perlita e vermiculita )

sacos de plástico

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1

Misture a água , MS major, MSO , MS Minor , BA, e açúcar em um copo usando a placa quente /agitador . No entanto , para criar plantas individuais de banana , retire o ba a partir da solução .

2

Medir o pH da solução usando o medidor de pH . Calibrar o medidor a 7, lave-o com água deionizada , e colocá-lo no copo cheio de solução. Aumentar a alcalinidade do pH utilizando uma solução de hidróxido de potássio até que a solução tem um pH de 5,8

3

Adicionar o ágar ( agente de gelificação ) a cerca de 7 gramas por litro – . Portanto cerca de 10,5 gramas para esta solução aproximadamente 1,5 litro .

4

Esterilizar todos os equipamentos, incluindo os 40 tubos de ensaio e o copo cheio de solução em autoclave por cerca de 25 minutos em um ciclo de líquido.

5

Verter o líquido quente , esterilizada em tubos de ensaio esterilizados em uma câmara de fluxo laminar . Deixá-los durante a noite fria.

6

mãos e braços de lavagem e pulverizá-los com etanol.

7

Use uma pinça para definir a cultura da banana em uma superfície estéril , e uso um bisturi estéril para raspar o material morto , raízes e folhas do tecido meristema ativo da cultura da banana.

8

Separe as mudas de tecido meristema e coloque cada um deles em separado, tubos de ensaio esterilizados preenchido com solução usando bisturi e pinças .

9

Esterilizar bisturi e pinças em etanol e mais de uma chama de gás . Ponha de lado .

10

Selar os testes tubos com algo como Parafilm .

11

Colocar os tubos de teste em uma incubadora para 6-10 semanas como o tecido cresce.

12

Quando a planta cresceu raízes e não mostra sinais de contaminação (como descoloração barrenta ) , pode ser plantada em solo. Retire a planta do tubo de ensaio e lave-o em água deionizada .

13

plantá-la em vasos de mudas com envasamento solo . Coloque os sacos de plástico por cima deles para preservar a umidade. Deixe os sacos de plástico por cerca de 1-2 semanas.

14

Mova a planta de banana para um vaso maior (ou no chão ) , uma vez que cresceu fora do pote de mudas.